Öz
Giriş
Biyofilm, kendi ürettiği polimerik bir matrise yapışan organize bir bakteri hücresi kolonisinden oluşur. Bu biyofilmler birçok hastalığın patofizyolojisinde ve klinik belirtilerinde rol oynar ve sıklıkla tedavi başarısızlığına yol açar. Biyofilm üreten mikroorganizmalar, biyofilm üretmeyen mikroplara kıyasla antimikrobiyal ajanlara karşı daha fazla direnç gösterir. Bu çalışma, yanık yarası mikrobiyotasında biyofilm üreten aerobik bakterilerin oranını belirlemeyi ve yanık yarası enfeksiyonuna neden olan bakteriler arasında çoklu ilaca dirençli bakterilerin yüzdesini tespit etmeyi amaçlamaktadır.
Gereç ve Yöntem
Bu kesitsel çalışma, Maharishi Markandeshwar Tıbbi Bilim ve Araştırma Enstitüsü Mullana, Ambala, Haryana’daki Mikrobiyoloji Bölümü’nde yürütülmüştür. Hastalardan ayrıntılı klinik özgeçmişleriyle birlikte toplam 50 yanık yarası sürüntü örneği alındı. Sürüntü örnekleri standart mikrobiyolojik yöntemler kullanılarak bakteri tanımlamasına tabi tutuldu. Tüm bakteri izolatları için modifiye edilmiş Kirby-Bauer tekniğinin disk difüzyon yöntemi kullanılarak antimikrobiyal duyarlılık testi yapıldı. Bu teknik Mueller-Hinton agar plakaları ve ticari olarak temin edilebilen antimikrobiyal diskler kullanılarak uygulandı. Tüp Yapışma yöntemi ve modifiye edilmiş Kongo kırmızısı agar yöntemi biyofilm oluşturan bakterileri tanımlamak için kullanıldı.
Bulgular
Elde edilen izolatların %56,8’i biyofilm oluşturan bakterilerdi. Biyofilm üreten bakterilerin toplam %48’i çoklu ilaca dirençliydi. Kinolonlar, sefalosporinler ve kotrimoksazol gibi sık kullanılan antibiyotiklere karşı belirgin bir direnç tespit edildi. Staphylococcus aureus izolatları ofloksasin, penisilin G ve amikasine dirençliydi; Klebsiella spp. izolatları ampisilin, seftazidim, trimetoprim sülfametoksazol, tetrasiklin ve kloramfenikole karşı oldukça dirençliydi; Pseudomonas aeruginosa izolatları trimetoprim sülfametoksazole karşı oldukça dirençliydi; Acinetobacter spp. izolatları sefotaksim, seftriakson, sefiksim ve trimetoprim sülfametoksazole karşı dirençliydi. Gram pozitif bakterilerden Staphylococcus aureus linezolid, vankomisine ve netilmisine %100 duyarlılık gösterirken koagülaz negatif Staphylococci izolatları tüm antibiyotiklere duyarlıydı. Gram negatif bakterilerden Klebsiella, Proteus, Pseudomonas aeruginosa ve Acinetobacter spp. karbapenem antibiyotiklerine karşı en yüksek duyarlılığı gösterdi.
Sonuç
Bu çalışma, yanık yarası enfeksiyonlarında çoklu ilaca dirençli bakterilerin artan yaygınlığını ve bu biyofilm oluşturan çoklu ilaca dirençli bakterilerle mücadele için etkili enfeksiyon kontrol önlemlerinin ve tedavi yöntemlerinin gerekliliğini vurgulamaktadır.
Anahtar Kelimeler: Biyofilm, çoklu ilaca dirençli bakteriler (MDR), antimikrobiyal direnç (AMR), bakteriyel enfeksiyon
Kaynakça
Gurung J, Khyriem AB, Banik A, Lyngdoh WV, Choudhury B, Bhattacharyya P. Association of biofilm production with multidrug resistance among clinical isolates ofAcinetobacter baumannii and Pseudomonas aeruginosa from intensive care unit. Indian J Crit Care Med. 2013;17:214-8.
Jamal M, Ahmad W, Andleeb S, Jalil F, Imran M, Nawaz MA, Hussain T, Ali M, Rafiq M, Kamil MA. Bacterial biofilm and associated infections. J Chin Med Assoc. 2018;8:7-11.
Sanchez CJ Jr, Mende K, Beckius ML, Akers KS, Romano DR, Wenke JC, Murray CK. Biofilm formation by clinical isolates and the implications in chronic infections. BMC Infect Dis. 2013;13:47.
Stoodley P, Sauer K, Davies DG, Costerton JW. Biofilms as complex differentiated communities. Annu Rev Microbiol. 2002;56:187-209.
Church D, Elsayed S, Reid O, Winston B, Lindsay R. Burn wound infections. Clin Microbiol Rev. 2006;19:403-34.
Peck MD. Epidemiology of burns throughout the world. Part I: Distribution and risk factors. Burns. 2011;37:1087-100.
Maitz J, Merlino J, Rizzo S, McKew G, Maitz P. Burn wound infections microbiome and novel approaches using therapeutic microorganisms in burn wound infection control. Adv Drug Deliv Rev. 2023;196:114769.
Opriessnig E, Luze H, Smolle C, Draschl A, Zrim R, Giretzlehner M, Kamolz LP, Nischwitz SP. Epidemiology of burn injury and the ideal dressing in global burn care - Regional differences explored. Burns. 2023;49:1-14.
Maslova E, Eisaiankhongi L, Sjöberg F, McCarthy RR. Burns and biofilms: priority pathogens andin vivo models. NPJ Biofilms Microbiomes. 2021;7:73.
Wolcott RD, Rhoads DD, Dowd SE. Biofilms and chronic wound inflammation. J Wound Care. 2008;17:333-41.
Parmanik A, Das S, Kar B, Bose A, Dwivedi GR, Pandey MM. Current Treatment Strategies Against Multidrug-Resistant Bacteria: A Review. Curr Microbiol. 2022;79:388.
CLSI, CLSI M100-ED30: 2020 Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing, 30th ed. 2020.
Bharadwaj A, Rastogi A, Pandey S, Gupta S, Sohal JS. Multidrug-Resistant Bacteria: Their Mechanism of Action and Prophylaxis. Biomed Res Int. 2022;2022:5419874.
Bayram Y, Parlak M, Aypak C, Bayram I. Three-year review of bacteriological profile and antibiogram of burn wound isolates in Van, Turkey. Int J Med Sci. 2013;10:19-23.
de Macedo JL, Santos JB. Bacterial and fungal colonization of burn wounds. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2005;100:535-9.
Ramakrishnan M, Putli Bai S, Babu M. Study on biofilm formation in burn wound infection in a pediatric hospital in Chennai, India. Ann Burns Fire Disasters. 2016;29:276-80.
Li X, Gu N, Huang TY, Zhong F, Peng G.Pseudomonas aeruginosa: A typical biofilm forming pathogen and an emerging but underestimated pathogen in food processing. Front Microbiol. 2023;13:1114199.
Pachori P, Gothalwal R, Gandhi P. Emergence of antibiotic resistancePseudomonas aeruginosa in intensive care unit; a critical review. Genes Dis. 2019;6:109-19.
Rebic V, Masic N, Teskeredzic S, Aljicevic M, Abduzaimovic A, Rebic D. The Importance of Acinetobacter Species in the Hospital Environment. Med Arch. 2018;72:325-9.
Chaudhary NA, Munawar MD, Khan MT, Rehan K, Sadiq A, Tameez-Ud-Din A, Bhatti HW, Rizvi ZA. Epidemiology, Bacteriological Profile, and Antibiotic Sensitivity Pattern of Burn Wounds in the Burn Unit of a Tertiary Care Hospital. Cureus. 2019;11:e4794.
E Abou Warda A, Molham F, Salem HF, Mostafa-Hedeab G, ALruwaili BF, Moharram AN, Sebak M, Sarhan RM. Emergence of High Antimicrobial Resistance among Critically Ill Patients with Hospital-Acquired Infections in a Tertiary Care Hospital. Medicina (Kaunas). 2022;58:1597.
El Hamzaoui N, Barguigua A, Larouz S, Maouloua M. Epidemiology of burn wound bacterial infections at a Meknes hospital, Morocco. New Microbes New Infect. 2020;38:100764.
Sabetha T, A.V.M. Balaji, Nithyalakshmi J, Mohanakrishnan K, Sumathi G. Study on Bacterial Flora of Burn Wound Infection: A Need for Microbiological Surveillance in Burn Units. Int J Curr Microbiol Appl Sci. 2017;6:807-15.
Abdi FA, Motumma AN, Kalayu AA, Abegaz WE. Prevalence and antimicrobial-resistant patterns ofPseudomonas aeruginosa among burn patients attending Yekatit 12 Hospital Medical College in Addis Ababa, Ethiopia. PLoS One. 2024;19:e0289586.
Datta S, Ghosh T, Sarkar D, Tudu NK, Chatterjee TK, Jana A. Bacteriological Profile of Burn Wounds and Their Antibiotic Susceptibility Pattern in a Tertiary Care Hospital. Int J Sci Study. 2016;4:141-5.
Maclean K, Njamo FOJP, Serepa-Dlamini MH, Kondiah K, Green E. Antimicrobial Susceptibility Profiles amongPseudomonas aeruginosa Isolated from Professional SCUBA Divers with Otitis Externa, Swimming Pools and the Ocean at a Diving Operation in South Africa. Pathogens. 2022;11:91.
Asati S, Chaudhary U. Prevalence of biofilm producing aerobic bacterial isolates in burn wound infections at a tertiary care hospital in northern India. Ann Burns Fire Disasters. 2017;30:39-42.
Mwanamoonga L, Muleya W, Lukwesa C, Mukubesa AN, Yamba K, Mwenya D, Nakazwe R, Kashweka G, Moonga L, Hang’ombe BM, Muma JB. Drug-resistant Acinetobacter species isolated at the University Teaching Hospital, Lusaka, Zambia. Scientific African. 2023;20:e01661.
Helmy AK, Sidkey NM, El-Badawy RE, Hegazi AG. Emergence of microbial infections in some hospitals of Cairo, Egypt: studying their corresponding antimicrobial resistance profiles. BMC Infect Dis. 2023;23:424.
Dhanalakshmi TA, Venkatesha D, Nusrath A, Asharani N. Evaluation of phenotypic methods for detection of biofilm formation in uropathogens. Natl J Lab Med. 2018;7:6-11.
Basnet A, Tamang B, Shrestha MR, Shrestha LB, Rai JR, Maharjan R, Dahal S, Shrestha P, Rai SK. Assessment of fourin vitro phenotypic biofilm detection methods in relation to antimicrobial resistance in aerobic clinical bacterial isolates. PLoS One. 2023;18:e0294646.
Harika K, Shenoy VP, Narasimhaswamy N, Chawla K. Detection of Biofilm Production and Its Impact on Antibiotic Resistance Profile of Bacterial Isolates from Chronic Wound Infections. J Glob Infect Dis. 2020;12:129-34.
Multani H, Singh VA, Ishrat A, Aleem S, Paul AK, Mehta S, Pottathil S, Thakur SJ. Biofilm ProducingPseudomonas aeruginosa Isolates From Infected Wound: A Demagouge for Clinicians. Int J Res. 2017;4:2076-83.
Deka N. Comparison of tissue culture plate method, tube method and Congo Red Agar Method for the detection of biofilm formation by coagulase negativeStaphylococcus isolated from non-clinical isolates. Int J Curr Microbiol Appl Sci. 2014;3:810-5.
Shrestha LB, Bhattarai NR, Khanal B. Comparative evaluation of methods for the detection of biofilm formation in coagulase-negative staphylococci and correlation with antibiogram. Infect Drug Resist. 2018;11:607-13.
Reddy KRM. Tube adherence test as a screening tool for detection of biofilm formation amongStaphylococcus aureus. Int J Curr Microbiol App Sci. 2017;6:1325-9.
Khan F, Shukla I, Rizvi M, Mansoor T, Sharma SC. Detection of biofilm formation inStaphylococcus aureus. Does it have a role in treatment of MRSA infections? Trends in Medical Research. 2011;6:116-23.
Foster TJ. Surface Proteins ofStaphylococcus aureus. Microbiol Spectr. 2019;7:10.
Kunwar A, Shrestha P, Shrestha S, Thapa S, Shrestha S, Amatya NM. Detection of biofilm formation amongPseudomonas aeruginosa isolated from burn patients. Burns Open. 2021;5:125-9.
